2026-10-05站台蛋白質定量教室可輸入自己的 Bradford 盤面數據→3 項變更輸入標準品與未知樣本的三孔 A595 讀值,即可得到扣空白後的曲線、斜率、截距與 R²,並以 0.98 判定是否通過。未知樣本依稀釋倍數回推原液濃度;落在標準範圍外、或曲線未達 0.98 時,標示為不可回報。R² 不足時,頁面會指出最可能的原因:最高點彎曲、單一離群點,或三孔讀值不一致。
2026-10-05站台濕實驗分析新增首項工具:蛋白質定量→2 項變更新增「濕實驗分析」分類,收納實驗台上常用計算,首項工具為 Bradford 與 BCA 孔盤讀值的蛋白質定量。學生孔盤流程會檢查三孔重複與 R²,再依稀釋倍數回推未知樣本濃度。
2026-10-05v0.4.1Primer、Probe 與 Plasmid 設計→8 項變更按下「開始分析」後,結果區會自動捲到可見範圍;輸入欄位很長時,第一個結果不再落在畫面上方看不到的位置執行後若修改了輸入,結果區會說明先前的結果已隱藏、要如何重新計算,不再顯示「請先貼上序列」手機上的判定表會保留「判定」欄:建議範圍移到每列的依據內容,「查看依據」按鈕只顯示箭頭候選卡片摘要保留大小寫有意義的術語(顯示 Tm,不再變成 TM)數值欄位清空時不再變成 0;超出欄位範圍的值會被拉回上下限,例如 primer 長度誤打 400 不會啟動讓頁面卡住的搜尋Molecular beacon 的 stem 分析模式會隱藏用不到的 Assay 脈絡與骨架修飾欄位;probe 的說明文字重新排在它所說明的欄位旁Plasmid 組裝規劃可只用片段執行,不必先貼上要註解的構築體「可接受」在判定表與設計影響提示中使用同一個圖示;卡片的展開按鈕會向輔助技術回報開合狀態;反應條件欄位不再在各工作台間重複使用相同 id
2026-10-05v0.4Primer、Probe 與 Plasmid 設計〃→6 項變更Probe 可以宣告骨架修飾(未修飾 DNA、LNA、PNA、2'-O-methyl)。宣告會改變哪些項目要判定、哪些只顯示,不只是一個標籤LNA:填入要做成 LNA 的位置後,會判定最長連續 LNA residue,因為超過四個會降低合成產率與純度(You 等人 2006 的規則 iv)。最多只判「可接受」,因為代價是合成品質而非 assay 失敗Probe 新增「已知變異位置」:落在 probe 下方且距任一端 1–2 個鹼基的變異判為需留意,因為該位置鑑別力明顯下降,靠近中央較佳(You 等人 2006 的規則 v)LNA 的建議規則可就地展開:以三連體對準錯配、G·T 錯配的例外、錯配未知時改修飾所有 adenine,以及 LNA–LNA 鹼基對會讓二級結構問題比本工具以未修飾 DNA 篩檢的結果更嚴重PNA 明示能力邊界:它無法作為 PCR primer,這正是 PNA clamping 的原理(Ørum 等人 1993);本工具未實作 PNA 專用 Tm 公式,因此不提供 PNA 的 TmProbe 與 primer 的 Tm 差規則,改為把已發表的 7–10 °C 建議與本身未驗證的 5–10 °C 區間並列呈現,不互相覆蓋(You 等人 2006)
2026-10-05v0.3Primer、Probe 與 Plasmid 設計〃→4 項變更MGB 與 molecular beacon probe 不再套用 hydrolysis probe 的區間判定。兩者仍顯示「Tm 高於 primer 的幅度」與 GC 含量,但標為未判定並說明原因:計算的 Tm 不含 MGB 的穩定化(Kutyavin 等人 2000),而 beacon 會不會打開取決於目標結合與 stem 的競爭(Bonnet 等人 1999;Tsourkas 等人 2003)Primer 新增「已知變異位置」:填入目標上的 SNP 位置後,每條 primer 都會檢查結合位下方的變異;距 3' 端 5 nt 內的變異判需留意,其他位置的單一變異判可接受,兩個以上判需留意(Lefever 等人 2013;Stadhouders 等人 2010)。設計與評估模式都適用Hydrolysis 與 MGB probe 新增兩項供應商慣例:避免連續四個以上的 G、優先選 C 多於 G 的那一股。兩項都標示「尚未驗證來源」,最多只會讓候選降為「可接受」,不會判為「需留意」更正:hydrolysis probe 的 GC 區間不再引用 Kutyavin 等人(2000),該文並未提出此區間;現改標「尚未驗證來源」