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稀釋與回推:不要把一管算成兩管

用稀釋倍數把待測液濃度回推到原液,並避免把呈色試劑體積重複算進去。

作者
CY
發表
蛋白定量:從讀值到報告 · 第 4/6 篇

標準曲線(standard curve)通常回答的是:「拿去測的待測液(test sample)有多濃?」研究者真正想知道的,常是:「原來那一管有多濃?」兩個問題之間隔著稀釋紀錄,而不是隔著一個可以憑感覺補上的倍率。

稀釋倍數的定義

每一步預稀釋(predilution)的稀釋倍數(dilution factor, DF)是:

DF = 最終體積 ÷ 取出的樣品體積

例如取 25 µL 原液(stock solution),補樣品稀釋液(sample diluent)到 250 µL,這一步是 10 倍,不是 9 倍;225 µL 是加入的稀釋液,不是 DF 的分子。若之後再做 2 倍稀釋,總 DF 是 10 × 2 = 20,不是 12。

一個教學示例

假設工具由標準曲線內插(interpolation)出待測液濃度 0.70 mg/mL,而原液先被 10 倍稀釋,再被 2 倍稀釋:

DF_total = 10 × 2 = 20
c_original = 0.70 mg/mL × 20 = 14.0 mg/mL

這組數字是教學示例,不是任何班級的原始讀值。關鍵是先確認 0.70 mg/mL 指的是哪一瓶,再把每一步有紀錄的 DF 相乘。

呈色試劑不是第二次預稀釋

如果標準曲線橫軸使用「加試劑前的標準品濃度」,未知樣品由同一條曲線回算出的也是加試劑前待測液濃度。反應孔(reaction well)裡的總體積會影響反應條件與讀值,但不能在曲線回算後再把 BCA 或 Bradford 的加樣比例乘一次。那會把同一個體積效果算兩遍。

把原始讀值與 DF 輸入濕實驗分析 › 蛋白質定量,看工具回報的孔中濃度(in-well concentration)與回推(back-calculation)原樣本濃度是否和手算一致。若不一致,先查單位、取樣體積、最終體積(final volume)與小數點,不要先改公式。

回推只能恢復已知的預稀釋;它不能讓超出標準曲線的讀值變成有效內插。

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