一管蛋白從冰箱拿出來時，看起來只是「樣品」。進入定量流程後，它會短暫擁有三個身分：原液（stock solution）、待測液（test sample）、反應液（reaction mixture）。三者都可能在紀錄裡被叫作 sample；若不先分清楚，後面的公式會很漂亮，答案卻對錯瓶子。
儀器讀到的不是濃度
分光光度計（spectrophotometer）或微孔盤讀取器（microplate reader）直接讀到的是吸光值（absorbance, A），例如 A562 或 A595。濃度是把這個讀值放到同一批標準品（standard）建立的曲線後，才內插（interpolation）得到的結果。
因此，一個完整的標記至少要保留：
- 原液：從哪一管取出的樣品。
- 待測液：加入呈色試劑（chromogenic reagent）前，實際拿去建立曲線的樣品濃度。
- 反應孔（reaction well）：待測液加上 BCA 或 Bradford 試劑後，儀器讀值所在的孔。
- 方法與波長：BCA 通常讀 562 nm；Bradford 通常讀 595 nm，實際仍以產品文件為準。
- 稀釋倍數（dilution factor）：待測液如何由原液配出來。
為什麼加了試劑不能再亂乘一次
標準品與未知樣品必須用同一種加樣量、同一種工作試劑（working reagent）量、同一個反應條件。若標準曲線（standard curve）的橫軸定義是「加入呈色試劑前的待測液濃度」，曲線回算出的就是待測液濃度；反應孔體積增加本身不是另一個要重複乘上的稀釋倍數。
真正要乘回去的，是原液到待測液之間有紀錄的預稀釋倍數（predilution factor）。這個差別是蛋白質定量（protein quantitation）最常見、也最安靜的錯誤：計算機不會跳出警告，它只會忠實地把錯的瓶子算得很精準。
用工具先整理名字，再整理數字
可把自己的標準品與未知樣品讀值輸入 Lab Grimoire 的濕實驗分析 › 蛋白質定量。輸入前先在原始表格增加方法、波長、樣品編號、預稀釋倍數與重複孔（replicate wells）欄位；工具負責曲線與回推，不能替我們猜測某個數字是哪一瓶。
這篇的停止條件
如果不知道讀值是 BCA 還是 Bradford、標準曲線的濃度單位、或樣品是否在讀值前已經稀釋，先停在資料整理，不要急著內插。缺少身分欄位時，最專業的結果不是補一個答案，而是把資料缺口寫出來。
本文的流程說明不等於某一班的實測紀錄；實際試劑、儀器與體積以當批產品文件和現場程序為準。