平衡試劑並準備標準品與樣品
先使套組成分回到室溫,再準備標準品序列與樣品,確保結合一致。
- STEP 1使所有試劑平衡至室溫30 分鐘
將套組成分自 4°C 保存處取出,置於室溫(20–25°C)至少 30 分鐘,使其平衡。 配製 1× Wash Buffer:以 ddH₂O 將 10× 濃縮液按 1:10 稀釋。充分混勻。計算所需體積:300 µL/well × 4 次清洗 × 使用的 well 數(多配 10–20%)。
為什麼低溫會降低 antibody 結合動力學與酵素活性,使訊號低估並壓縮標準曲線。所有 well 溫度一致,對 plate 內再現性至關重要(Tighe et al., 2015)。
- STEP 2復溶並序列稀釋標準品30 分鐘
復溶凍乾標準品:加入 kit 指定體積的 Sample Diluent。靜置 15 分鐘;輕輕倒置混勻,勿以 vortex 混勻。 標記 7 支 microcentrifuge tube(S6 至 S1),另標記一支作為 blank(S0)。 將 Sample Diluent 加入 S6–S1 tube(依 kit 指定體積;常用每管 300 µL)。 依 kit 指定體積,將復溶後的最高濃度標準品(S7)轉移至 S6 tube;上下吸放混勻 10 次。更換 pipette tip。 進行 2 倍序列稀釋:依序由 S6 → S5 → S4 → S3 → S2 → S1 轉移;每次轉移間更換 pipette tip。 S0 僅含 Sample Diluent(0 pg/mL blank)。勿加入標準品。 所有標準品均做重複測定。
為什麼標準品序列稀釋準確度是標準曲線誤差的最大來源。轉移間更換 pipette tip 可避免殘留帶入;每一步以一致的吸放動作(吸取並排出 10×)確保充分混勻。2 倍稀釋序列是多數 cytokine ELISA kit 的標準做法,可產生跨越 2–3 個數量級的 7 點校正範圍。
注意勿以 vortex 混勻復溶後的標準品——蛋白質聚集可能使曲線高濃度端呈非線性。
- STEP 3準備樣品20 分鐘
細胞培養上清液:於 4°C 以 1,000 × g 離心 10 min,使碎屑沉澱。收取澄清上清液。立即使用,或分裝後保存於 −80°C;避免超過 2 次凍融。 Serum:室溫凝血 30 min,再以 2,000 × g 離心 10 min。收取上層 serum。 Plasma:將血液收集至含 EDTA 或 heparin 的 tube;以 2,000 × g 離心 10 min。收取上層 plasma。 依需求以 Sample Diluent 稀釋樣品(若分析物濃度未知,先稀釋 2 倍;稀釋後濃度須落在標準曲線線性範圍內)。
為什麼未稀釋樣品中的細胞碎屑與脂質可能造成基質干擾(高分析物濃度時的 hook effect、非特異性結合)。若抗凝劑可能干擾 assay,細胞激素 ELISA 優先使用 serum 而非 plasma(Lequin, 2005)。