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夾心式 ELISA(Sandwich ELISA)通用流程

ELISA 是一種以 plate 為基礎的免疫測定,可透過 antibody–antigen 結合與酵素呈色讀值,定量生物樣品中的特定分析物(蛋白質、荷爾蒙、細胞激素)。本流程說明 sandwich(two-antibody)格式:固定於 microplate 的 capture antibody 結合目標抗原;biotinylated detection antibody 接著結合同一目標的第二個表位;HRP-conjugated streptavidin 放大訊號;TMB substrate 產生與分析物濃度成正比的顏色。比較 450 nm 吸光值與標準曲線以推算濃度。本流程涵蓋標準曲線定量與品質管制接受標準;陽性對照(最高濃度標準品)與 blank(零濃度標準品)皆為必要。

biochemistry 中階 3–4 小時 10 步驟
實驗材料 10 · 儀器設備 9

實驗材料

  • ELISA Kit (pre-coated 96-well plate included)1 kit · 依各 kit 規格;本流程採用多數商用 cytokine/growth-factor kit 常見的 sandwich ELISA 格式
  • Lyophilized or liquid standard依 kit 規格 · 依說明保存;以 Sample Diluent 溶解凍乾粉末;勿以 vortex 混勻
  • Biotinylated detection antibody依 kit 規格 · 依 kit 說明稀釋至 working concentration(常用 1:100)
  • HRP-Streptavidin concentrate依 kit 規格 · 依 kit 說明稀釋至 working concentration(常用 1:40–1:100);使用前立即配製
  • TMB Substrate Solution依 kit 規格 · 避光保存;使用前溶液應為無色;若呈藍色則丟棄
  • Stop Solution (2 N H₂SO₄)依 kit 規格 · 具腐蝕性;穿戴手套與護目裝備
  • Wash Buffer (10× PBS-T concentrate)依 kit 規格 · 以去離子水按 1:10 稀釋,配製 1× working solution
  • Sample Diluent / Assay Buffer依 kit 規格 · 用於標準品復溶、序列稀釋及樣品稀釋
  • Deionized water (ddH₂O)適量 · 用於配製 Wash Buffer
  • Plate sealer film適量 · 避免反應步驟期間蒸發

儀器設備

  • Microplate spectrophotometer (ELISA reader)須可讀取 450 nm;建議以 570 nm 或 630 nm 進行雙波長校正
  • Multichannel pipette (8-channel, 50–300 µL)可降低 pipetting CV;用於 plate 內所有液體分注
  • Plate washer (manual or automated)優先使用自動式;手動時使用 squirt bottle,300 µL/well/wash
  • Plate shaker / orbital rocking platform反應期間設定為輕微搖動(約 150–200 rpm)
  • 37°C incubator or water bath供標準室溫反應使用;若室溫穩定,也可在室溫(20–25°C)桌面反應
  • Refrigerator (4°C)供隔夜反應選項(Step 4)使用
  • Microcentrifugeassay 前以 1,000 × g 離心 10 min,去除細胞培養上清液
  • 1.5 mL microcentrifuge tubes用於標準品序列稀釋
  • Absorbent paper / lint-free tissue清洗後用於拍乾 plate

已完成 0 / 10 步

階段 01 / 05準備

平衡試劑並準備標準品與樣品

先使套組成分回到室溫,再準備標準品序列與樣品,確保結合一致。

  1. STEP 1使所有試劑平衡至室溫30 分鐘

    將套組成分自 4°C 保存處取出,置於室溫(20–25°C)至少 30 分鐘,使其平衡。 配製 1× Wash Buffer:以 ddH₂O 將 10× 濃縮液按 1:10 稀釋。充分混勻。計算所需體積:300 µL/well × 4 次清洗 × 使用的 well 數(多配 10–20%)。

    為什麼低溫會降低 antibody 結合動力學與酵素活性,使訊號低估並壓縮標準曲線。所有 well 溫度一致,對 plate 內再現性至關重要(Tighe et al., 2015)。

  2. STEP 2復溶並序列稀釋標準品30 分鐘

    復溶凍乾標準品:加入 kit 指定體積的 Sample Diluent。靜置 15 分鐘;輕輕倒置混勻,勿以 vortex 混勻。 標記 7 支 microcentrifuge tube(S6 至 S1),另標記一支作為 blank(S0)。 將 Sample Diluent 加入 S6–S1 tube(依 kit 指定體積;常用每管 300 µL)。 依 kit 指定體積,將復溶後的最高濃度標準品(S7)轉移至 S6 tube;上下吸放混勻 10 次。更換 pipette tip。 進行 2 倍序列稀釋:依序由 S6 → S5 → S4 → S3 → S2 → S1 轉移;每次轉移間更換 pipette tip。 S0 僅含 Sample Diluent(0 pg/mL blank)。勿加入標準品。 所有標準品均做重複測定。

    為什麼標準品序列稀釋準確度是標準曲線誤差的最大來源。轉移間更換 pipette tip 可避免殘留帶入;每一步以一致的吸放動作(吸取並排出 10×)確保充分混勻。2 倍稀釋序列是多數 cytokine ELISA kit 的標準做法,可產生跨越 2–3 個數量級的 7 點校正範圍。

    注意勿以 vortex 混勻復溶後的標準品——蛋白質聚集可能使曲線高濃度端呈非線性。

  3. STEP 3準備樣品20 分鐘

    細胞培養上清液:於 4°C 以 1,000 × g 離心 10 min,使碎屑沉澱。收取澄清上清液。立即使用,或分裝後保存於 −80°C;避免超過 2 次凍融。 Serum:室溫凝血 30 min,再以 2,000 × g 離心 10 min。收取上層 serum。 Plasma:將血液收集至含 EDTA 或 heparin 的 tube;以 2,000 × g 離心 10 min。收取上層 plasma。 依需求以 Sample Diluent 稀釋樣品(若分析物濃度未知,先稀釋 2 倍;稀釋後濃度須落在標準曲線線性範圍內)。

    為什麼未稀釋樣品中的細胞碎屑與脂質可能造成基質干擾(高分析物濃度時的 hook effect、非特異性結合)。若抗凝劑可能干擾 assay,細胞激素 ELISA 優先使用 serum 而非 plasma(Lequin, 2005)。

階段 02 / 05捕捉

well 加樣並捕捉分析物

預包被的 capture antibody 留住目標;清洗移除未結合物質。

  1. STEP 4加入標準品與樣品;反應2 小時 or overnight

    每個 well 加入各標準品(S0–S7)與各樣品 100 µL。安排重複測定;blank(S0)放入 ≥ 2 個 well。 以 adhesive film 封住 plate。 於 plate shaker 上以輕微搖動在室溫反應 2 小時(約 150 rpm)。若要提高靈敏度,改於 4°C 隔夜反應(16–18 h)。 反應後,吸除或彈出 well 內容物。將 plate 用力拍在 absorbent paper 上,移除殘液。

    為什麼於 4°C 延長反應,可使 analyte–capture antibody 平衡往完全結合方向移動並提高靈敏度。但此作法增加計時變異;常規 assay 在室溫反應 2 h 已足夠,且再現性較高。

  2. STEP 5清洗 plate(第 1 次清洗循環)5 分鐘

    每個 well 加入 300 µL Wash Buffer。 浸泡 1–2 分鐘。 吸除或彈出洗液。將 plate 拍在 absorbent paper 上。 共重複至 4 次清洗循環。 最後一次清洗後,翻轉 plate 並用力拍在新的 absorbent paper 上,移除所有殘留 buffer。

    為什麼清洗不完全會使未結合的樣品蛋白質與 antibody 留在 well,升高背景訊號(blank OD > 0.1)。預包被 sandwich ELISA kit 的標準最低清洗次數為四次。

    注意清洗間勿讓 plate 乾燥。乾燥的 well 可能使 antibody 非特異性結合於裸露塑膠。立即進行下一步。

階段 03 / 05偵測

建立酵素連結的偵測複合體

antibody 結合不同 epitope;streptavidin–biotin 結合並帶 HRP。

  1. STEP 6加入 detection antibody;反應1 小時

    依 kit 說明,將 biotinylated detection antibody 稀釋至 working concentration(常用以 Sample Diluent 或 Assay Buffer 按 1:100 稀釋)。 每個 well 加入 100 µL。 封住 plate。 於室溫在 plate shaker 上反應 1 小時。 清洗 plate 4 次(程序同 Step 5)。

    為什麼detection antibody 結合捕捉後 analyte 上另一個不同表位。Biotin conjugation 可透過 streptavidin-HRP 結合放大訊號(K d ≈ 10 −15 M),其結合力比多數 antibody–antigen 互動高數個數量級(Engvall & Perlmann, 1971)。

  2. STEP 7加入 HRP-Streptavidin;反應45 分鐘

    依 kit 說明將 HRP-Streptavidin 稀釋至 working concentration(常用以 Assay Buffer 按 1:40–1:100 稀釋)。使用前立即配製。 每個 well 加入 100 µL。 封住 plate。避光(以鋁箔覆蓋或置於暗處)。 於室溫在 plate shaker 上反應 45 分鐘。 清洗 plate 4–5 次(此步驟增加至 5 次清洗,以降低 HRP 背景)。

    為什麼streptavidin–biotin 結合接近不可逆,可確保 HRP 定量定位於各被捕捉的分析物。此步驟尤其需要充分清洗,因殘留 HRP 會在所有 well 造成 TMB 假陽性氧化。

    注意HRP-Streptavidin 易受變性影響。稀釋後的 working solution 勿冷凍;於本次實驗期間使用。

階段 04 / 05顯色

避光反應,形成藍色 TMB 訊號

HRP 氧化 TMB;藍色訊號反映已結合 analyte 的量。

  1. STEP 8加入 TMB substrate;顯色15–30 分鐘

    每個 well 加入 100 µL TMB Substrate Solution。勿讓 pipette tip 接觸 well 表面。 勿封住 plate。避光。 於室溫反應。監測顯色:analyte 濃度高的 well 應在 5–10 分鐘內轉藍。顯色完成時,最高標準品呈深藍色,blank 無色或僅呈極淡藍。 目標反應時間:總計 15–30 分鐘;blank well 出現可見顏色前即停止。

    為什麼TMB 受 HRP 氧化後形成藍色 diimine 產物。顯色速率與 HRP(因此與分析物)濃度成正比。blank 出現顏色即表示發生非特異性氧化,原因可能是顯色過久、TMB 污染或清洗不足。

    注意TMB 對光敏感。避光保存;僅使用無色(非藍色)的溶液。呈藍色的 TMB stock 已部分氧化,會使所有 well 的背景升高。

階段 05 / 05讀值

終止反應、讀取吸光值並配適曲線

Stop Solution 將藍色 TMB 轉為黃色;以 4PL 配適曲線,將校正後吸光值換算為濃度。

  1. STEP 9終止反應;測定吸光值15 分鐘

    依 kit 說明,以與加入 TMB 相同的順序及速度,逐一向各 well 加入 Stop Solution(通常每個 well 50–100 µL)。 輕拍 plate 側面混勻。顏色應一致地由藍轉為黃色。若 well 仍呈綠色或混色,表示混勻不完全——再次輕拍。 加入 Stop Solution 後 15 分鐘內,測定 450 nm(主要波長)與 570 nm(參考波長)的吸光值。 記錄:最終 OD = OD450 − OD570。

    為什麼sulfuric acid(Stop Solution)將藍色 TMB diimine 轉為穩定的黃色磺酸化形式,其吸收峰在 450 nm。以 570 nm 參考波長相減,可消除影響原始 OD 450 的光學假象(plate 刮痕、指紋、氣泡)。須在 15 分鐘內讀值,因黃色產物不會無限期穩定(Lequin, 2005)。

    注意Stop Solution 為 2 N H₂SO₄(強酸)。穿戴手套與護目裝備。小心 pipette;酸性氣霧可能污染相鄰 well。

  2. STEP 10配適標準曲線並計算濃度

    使用 ELISA reader 軟體或資料分析工具,繪製標準品濃度(X 軸,log scale)與校正 OD(Y 軸)。 以 4-Parameter Logistic(4PL)模型配適。接受曲線前確認 R² > 0.99。 對每個樣品 well:在標準曲線上內插 OD,以取得濃度。 將內插濃度乘以稀釋倍數,換算原始樣品中的濃度。 計算重複測定平均值;回報平均值 ± SD(或 CV%)。

    為什麼4PL 模型可準確描述 OD 與分析物濃度在完整動態範圍內的 S 型關係。只有在曲線狹窄的線性區段才可使用線性迴歸;在兩端使用會引入系統性誤差(Tighe et al., 2015)。

    注意樣品 OD 高於最高標準品(S7)時,須提高稀釋倍數後重測。低於最低非零標準品(S1)的數值,回報為「< LLOD」(偵測下限);勿在曲線範圍外推。